Dolomite Formation Facilitated by Three Halophilic Archaea
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摘要: 白云石成因问题是地质学上长期悬而未决的难题之一.近年来，微生物诱导白云石沉淀逐渐成为白云石成因的重要理论之一，但其中微生物的作用机理远未探明.现生白云石主要分布于高盐环境，该环境中的优势菌群为嗜盐菌，包括嗜盐细菌和嗜盐古菌.因而此次选取三株嗜盐古菌Natrinema sp.J7-1、Natrinema sp.J7-3和Natrinema sp.LJ7，研究其诱导白云石沉淀的能力，并对比不同细胞浓度对白云石沉淀的影响，以期更深入地了解微生物在白云石形成中的作用.通过X射线衍射 (XRD) 检测沉淀物的物相，利用扫描电子显微镜 (SEM) 观察所得矿物形态，同时辅以能量色散谱分析 (EDS) 分析矿物的元素组成.实验结果表明三株嗜盐古菌皆可诱导球型、哑铃型、花椰菜型以及球形聚集体等白云石的形成，且在较高细胞浓度下诱导形成的矿物中白云石含量增多.分析表明细胞浓度的增加会导致细胞表面羧基含量的增加，从而为白云石的沉淀提供更多的成核位点，有利于Mg进入矿物晶格，从而诱导白云石沉淀，本结果进一步提高了对微生物白云石成因机理的认识.Abstract: The dolomite formation problem has been puzzling geologists for a long time. Recently, microbial mediation is becoming one leading theory for dolomite formation, though many details still remain poorly understood. The exclusive occurrence of modern dolomite in saline environments leads to the investigation of the role of halophiles in dolomite formation. In this study, we focus on the effect of salinity and cell concentrations on dolomite mineralization with three halophilic archaea, Natrinema sp.J7-1, Natrinema sp.J7-3 and Natrinema sp.LJ7. These halophilic archaea were collected and subject to the mineral phase identification, morphology observation and element analysis via X-ray Diffraction (XRD) and Scanning Electronic Microscopy equipped with Energy Dispersive Spectrum (EDS). Results confirm that all the strains used are capable of facilitating the dolomite formation under higher salinity conditions, and the yields of dolomite increase with cell concentration. Morphologically, dolomite is of the shape of sphere, dumb-bell, cauliflower and conglobulation. It is proposed that high salinity and high cell density will result in the more carboxyl groups on cell surface which can serve as nucleation sites for dolomite formation, which is favorable for dolomite formation. The results offer more details about microbial role in dolomite formation and enhance our understanding about the mechanism.
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Key words:
- dolomite /
- halophile /
- cell concentration /
- salinity /
- mineralogy
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白云石是由镁离子、钙离子和碳酸根离子组成的碳酸钙镁矿物[CaMg (CO3)2].区别于其他含镁碳酸盐矿物，标准白云石晶体中镁离子与钙离子的原子比例为1:1，两种离子各自成层分布，且两种离子层依次交错排列.因此标准的白云石也被称为“有序白云石 (ordered dolomite)”.在地质历史时期，特别是寒武纪之前，白云岩广泛分布，但其在现代海洋中却少有发现.另外，在地表温压条件下 (25 ℃，标准大气压) 实验室内通过大量的无机沉淀过程均不能形成有序白云石 (Land, 1998).这种难以解释的现象被称为“白云石之谜”(梅冥相，2012).除了理论研究意义，白云石成因研究也具有重要的经济价值.白云岩 (主要成分为白云石的碳酸盐岩) 是重要的油气储层，人们在四川盆地 (刘树根等, 2008)、鄂尔多斯盆地 (南君祥和杨奕华, 2001) 等地均有发现其存在.
自白云岩发现至今的两百多年间，研究者就白云石的成因提出了诸多沉积模式，如“回流渗透”(Adams and Rhodes, 1960)、“蒸发泵吸”(Hsü and Siegenthaler, 1969) 等模式，但都没能很好地解释古代白云石的成因.直到20世纪90年代，Vasconcelos利用硫酸盐还原菌成功沉淀出白云石，并通过扫描电镜 (SEM) 观察发现，微生物成因的白云石颗粒大多呈纳米级的球型 (Vasconcelos et al., 1995)，由此提出“微生物白云石模式”(Vasconcelos and McKenzie, 1997).随后，产甲烷菌 (Kenward et al., 2009)、硫酸盐还原菌 (Deng et al., 2010; Bontognali et al., 2012)、嗜盐细菌 (Sánchez-Román et al., 2008) 等均被报道能在地表温压条件下诱导白云石沉淀，并发现这些微生物诱导的矿物形态均为球型 (Bontognali et al., 2008; Bontognali et al., 2012)、哑铃型、花椰菜型 (VanLith et al., 2003)，或球粒聚集体.早期研究表明硫酸盐还原菌消耗硫酸根并释放被硫酸根离子螯合的镁离子，是其诱导白云石沉淀的关键所在 (Vasconcelos et al., 1995)；但近年来的野外调查和实验室模拟实验均表明白云石可以在高硫酸盐浓度环境中沉积 (Sánchez-Román et al., 2009).由此可见，硫酸盐浓度不是限制白云石形成的唯一因素.微生物通过呼吸作用消耗有机质产生二氧化碳，提高水体碱度被认为是其促进白云石形成的可能机理 (Sánchez-Román et al., 2009).
此外，细胞以及细胞分泌的胞外聚合物 (EPS) 能吸附和聚集钙离子和镁离子，并促进成核反应的发生，进而诱导碳酸钙镁沉淀 (Bontognali et al., 2014).有研究表明细胞表面以及胞外聚合物中的多糖和氨基酸可促进水合镁离子的去水合过程，且可能促使镁离子与钙离子等比例进入矿物晶格中，从而形成碳酸钙镁沉淀 (Wang et al., 2009; Roberts et al., 2013；Zhang et al., 2015).然而，微生物诱导白云石沉淀的详细机制仍未明确.
最新的研究表明盐度可能是影响微生物沉淀白云石的重要环境因子之一.现生白云石通常分布于咸水环境，例如阿布扎比海岸萨布哈 (过饱和)(Patterson and Kinsman, 1982)、巴西Lagoa潟湖 (过饱和)(Vasconcelos and McKenzie, 1997)、中国青海湖 (盐度约15‰)(于炳松等，2007) 等.高盐环境的优势微生物种群为嗜盐菌，包括嗜盐细菌、嗜盐古菌，以及部分硫酸盐还原菌和产甲烷菌 (Oren，2013).从上述环境中分离得到的纯菌株，包括Desulfovibrio brasiliensis(Vasconcelos and McKenzie, 1997)、Virgibacillus marismortui 123(Sánchez-Román et al., 2009) 等亦能成功诱导白云石沉淀.盐度的改变，会促使细胞通过一系列的生理活动以维持细胞内部正常的渗透压，从而影响细胞表面官能团的性质.此外细胞浓度增加会增加细胞总的表面积以及细胞表面有关官能团的数量，进而影响镁离子和钙离子在细胞表面-水溶液之间的分配，这些因素皆有可能影响白云石的形成.到目前为止，尚未有人探明不同盐度以及细胞浓度是否对白云石沉淀有所影响.现生白云石大多发现于高盐环境中 (Peterson et al., 1963; Patterson and Kinsman, 1982; Vasconcelos and McKenzie, 1997; 姜文英等，2010；Last et al., 2012).在高盐环境中嗜盐细菌及嗜盐古菌是优势种群.虽然已有研究表明嗜盐细菌可以沉淀白云石 (Sánchez-Román et al., 2008)，但对嗜盐古菌诱导白云石沉淀的研究却相对薄弱，因此本文选用3株Natrinema属的嗜盐古菌作为材料，在200‰和280‰两个盐度下培养，收集对数生长期后期的细胞，并配制成细胞浓度 (OD600) 为1.0、1.5、2.0和2.5的菌液用于沉淀白云石，以期回答盐度及细胞浓度对嗜盐古菌诱导白云石沉淀的影响.
1. 材料与方法
1.1 供试菌株及培养方法
所用菌株为武汉大学陈向东教授提供的Natrinema sp.J7-1、Natrinema sp.J7-3和Natrinema sp.LJ7三株嗜盐古菌.基于MGM培养基 (Zhang et al., 2012)，配制盐度为200‰和280‰的两种培养基培养嗜盐古菌.每升盐度为200‰的培养基的成分为：MgCl2·6H2O 18.00 g，MgSO4·7H2O 21.00 g，KCl 4.20 g，蛋白胨5.00 g，酵母提取物3.00 g，CaCl2 0.56 g，NaCl 156.14 g.盐度为280‰培养基，每升含NaCl 236.14 g，其他与200‰培养基成分相同.用去离子水定容至1 000 mL，之后用1.00 mol/L的NaOH溶液将培养基的pH调至7.50，121 ℃灭菌20 min备用.
1.2 菌株生长曲线的测定
将灭菌后的培养基分装到50 mL无菌离心管中，每管20.0 mL；取两管培养基作为空白对照.活化J7-1菌液至对数期，再取新鲜培养液重复活化一次.取第二次活化的菌液，按照1:100的比例接种到各离心管中，用灭过菌的封口膜封口，置于45 ℃，150 rpm条件下培养.J7-3，LJ7做相同处理，所有样品设置两组平行样，每隔12 h，用紫外分光光度测试各菌液在600 nm处的吸光度 (OD600)，用以表示不同的细胞浓度.
1.3 白云石沉淀实验
首先，配置盐度200‰和280‰的洗液各500 mL，用于细胞沉淀的洗涤.每500 mL 200‰盐度的洗液中含有MgCl2·6H2O 11.27 g，CaCl2 0.62 g，NaCl 94.10 g.280‰盐度的洗液中NaCl 134.10 g，其他成分与200‰盐度洗液相同，用去离子水定容至500 mL.
接着，配制盐度为200‰、280‰的两种培养基各1 000 mL，分装至500 mL锥形瓶中，按照菌液比培养基为1:100的比例分别将二次活化至对数期的菌液接种到两种新鲜培养基中，然后在45 ℃、150 rpm条件下振荡培养置对数后期，5 000×g离心10 min，去除上清液，得到细胞沉淀.分别用盐度为200‰、280‰的洗液洗涤对应盐度下的细胞沉淀，之后5 000×g离心10 min，去除上清液，重复洗涤过程3次.再用对应盐度的洗液稀释细胞，得到细胞浓度 (OD600) 分别1.0、1.5、2.0、2.5的菌液各30 mL，取10.00 mL菌液备用.
然后，按表 1配制白云石沉淀体系.其中，0.20 mol/L碳酸钠溶液为现配，且以每次100 μL的速度缓慢加入，边加边振荡以保证沉淀体系的均一性.
表 1 嗜盐古菌沉淀白云石实验体系的组成Table Supplementary Table The componentsof dolomite precipitation experiments with halophilic archaea组分 200‰沉淀体系 280‰沉淀体系 细胞悬液 10.00 mL 10.00 mL 1.00 mol/L MgCl2 2.00 mL 2.00 mL 0.10 mol/L CaCl2 2.00 mL 2.00 mL 0.20 mol/L Na2CO3 2.00 mL 2.00 mL NaCl 1.75 g 2.55 g 超纯水 补至20.00 mL 补至20.00 mL 最后，将细胞-沉淀溶液体系置于45 ℃摇床中，200 rpm振荡72 h后，通过增速离心收集沉淀.增速离心方法为1 000×g离心2 min、3 000×g离心2 min、5 000×g离心5 min.弃上清液后，向沉淀物中加入20.00 mL超纯水洗涤沉淀，重复增速离心并弃上清液；然后重复该洗涤过程一次.将洗涤后的沉淀物冷冻干燥并置于干燥皿中备用.
1.4 物相分析
使用Bruker AXS D8-Focus X射线衍射仪 (XRD) 测定矿物相，测试条件为CuKα射线，Ni滤波，40 kV，40 mA，LynxEye192位阵列探测器，扫描步长2θ为0.01°，扫描速度每步0.05 s，λ=1.540 598Å.
利用扫描电镜/能量衍射谱分析 (SEM/EDS；Hitachi SU8010) 观察矿物形态以及分析元素组成，SEM电压为15 kV，EDS电压为20 kV，激发电子束为30~40 μA (王红梅等，2015).
2. 实验结果
2.1 嗜盐古菌的生长曲线
三株嗜盐古菌的生长曲线变化趋势接近 (图 1).盐度为200‰时，三株菌都在约80 h进入稳定期；而盐度为280‰时，J7-1和J7-3都在约60 h进入稳定期，LJ7则在80 h之后才到达稳定期.由生长曲线可确定三株嗜盐古菌在两种盐度培养基中到达对数后期的时间均在40 h左右，因此选择该时间点作为后续成矿实验中细胞收集的时间.
图 1 嗜盐古菌J7-1、J7-3、LJ7生长曲线a，c，e分别为J7-1、J7-3和LJ7在200‰盐度下的生长曲线；b，d，f分别为J7-1、J7-3和LJ7在280‰盐度下的生长曲线Fig. 1. Growth curves of halophilic archaea J7-1, J7-3 and LJ72.2 物相鉴定结果
三株嗜盐古菌在盐度为200‰及280‰均能诱导白云石沉淀，且在200‰盐度下诱导白云石需要更高的细胞浓度，而280‰盐度下较低的细胞浓度就能成功诱导白云石沉淀 (图 2).J7-1在盐度为200‰培养基培养时，细胞浓度 (OD600) 为2.5的菌液诱导形成白云石和单水合方解石 (图 2① a1，表 2)；细胞浓度 (OD600) 为2.0的菌液诱导形成单水合方解石 (图 2① a2)；细胞浓度 (OD600) 为1.5的菌液诱导形成文石 (图 2① a3)；细胞浓度 (OD600) 为1.0的菌液诱导形成文石 (图 2① a4).J7-1在盐度为280‰培养基培养时，细胞浓度 (OD600) 为2.5的菌液诱导形成白云石和单水合方解石 (图 2② b1，表 2)；细胞浓度 (OD600) 为2.0的菌液诱导形成单水合方解石 (图 2② b2)；细胞浓度 (OD600) 为1.5的菌液诱导形成单水合方解石 (图 2② b3)；细胞浓度 (OD600) 为1.0的菌液诱导形成文石 (图 2② b4).
图 2 三株嗜盐古菌诱导形成的矿物的XRD图谱①，③，⑤分别表示J7-1，J7-3，LJ7在200‰盐度下诱导形成的矿物XRD图谱；②，④，⑥分别表示J7-1，J7-3，LJ7在280‰盐度下诱导形成的矿物XRD图谱.x1~5分别表示沉淀体系中菌液浓度 (OD600) 为2.5，2.0，1.5，1.0和0；x为a，b，c，d，e，f.XRD图谱上标注的M.单水合方解石，A.文石，D.白云石Fig. 2. XRD spectra of the precipitates induced by three halophilic archaeal strains表 2 各沉淀体系中白云石特征峰的“d值”及2θ角Table Supplementary Table The"d valve" and 2θ of dolomite diffraction peaks in experiments with halophilic archaea沉淀体系 d104值 (A) 2θ值 (°) d113值 (A) 2θ值 (°) J7-1-200-2.5* 2.887 7 30.941 J7-1-280-2.5 2.891 1 30.905 2.191 5 41.156 J7-3-200-2.5 2.911 6 30.681 J7-3-280-1.5 2.893 4 30.879 2.191 0 41.167 J7-3-280-2.0 2.908 0 30.720 2.191 0 41.167 J7-3-280-2.5 2.893 4 30.879 2.193 0 41.130 LJ7-200-2.5 2.908 5 30.715 2.101 0 40.971 LJ7-280-1.5 2.897 8 30.831 2.199 0 41.009 LJ7-280-2.0 2.902 0 30.785 2.201 0 40.971 LJ7-280-2.5 2.897 8 30.831 2.200 9 40.972 注：*为J7-1-200-2.5：J7-1为菌株名称，200为沉淀体系的盐度 (‰)，2.5为细胞浓度 (OD600) 为2.5. J7-3在盐度为200‰培养基培养时，细胞浓度 (OD600) 为2.5的菌液诱导形成白云石 (图 2③ c1)；细胞浓度 (OD600) 为2.0的菌液诱导形成单水合方解石 (图 2③ c2)；细胞浓度 (OD600) 为1.5的菌液诱导形成文石 (图 2③ c3)；细胞浓度 (OD600) 为1.0的菌液诱导形成文石 (图 2③ c4).J7-3在盐度为280‰培养基培养时，细胞浓度 (OD600) 为2.5的菌液诱导形成白云石 (图 2④ d1，表 2)；细胞浓度 (OD600) 为2.0的菌液诱导形成白云石 (图 2④ d2，表 2)；细胞浓度 (OD600) 为1.5的菌液诱导形成白云石和文石 (图 2④ d3，表 2)；细胞浓度 (OD600) 为1.0的菌液诱导形成单水合方解石 (图 2④ d4).
LJ7在盐度为200‰培养基培养时，细胞浓度 (OD600) 为2.5的菌液诱导形成白云石和单水合方解石 (图 2⑤e1)；细胞浓度 (OD600) 为2.0的菌液诱导形成单水合方解石 (图 2⑤ e2)；细胞浓度 (OD600) 为1.5的菌液诱导形成单水合方解石和文石 (图 2⑤ e3)；细胞浓度 (OD600) 为1.0的菌液诱导形成单水合方解石 (图 2⑤ e4).LJ7在盐度为280‰培养基培养时，细胞浓度 (OD600) 为2.5的菌液诱导形成白云石 (图 2⑥ f1，表 2)；细胞浓度 (OD600) 为2.0的菌液诱导形成白云石 (图 2⑥ f2，表 2)；细胞浓度 (OD600) 为1.5的菌液诱导形成白云石 (图 2⑥ f3，表 2)；细胞浓度 (OD600) 为1.0的菌液诱导形成单水合方解石 (图 2⑥ f4).
2.3 白云石的形态特征
选取细胞浓度 (OD600) 为2.5时嗜盐古菌诱导生成的沉淀物进行SEM分析，观察白云石的形态特征.结果显示，嗜盐古菌所诱导的白云石多为哑铃型 (图 3a)，球型 (图 3b)，花椰菜型 (图 3c) 和聚集体型 (图 3d).通过能谱扫描确定矿物的元素组成，发现Mg/Ca均近似为1:1.
图 3 嗜盐古菌诱导形成的白云石的形态特征及元素组成a.J7-1-200-2.5体系中哑铃型白云石；b.J7-1-280-2.5体系中球型白云石；c.LJ7-200-2.5体系中花椰菜型白云石；d.J7-1-200-2.5体系中聚集体型白云石Fig. 3. Morphology and elemental composition of dolomite induced by halophilic archaea3. 讨论
微生物细胞表面富含羧基、磷酸基等官能团.在近中性或者碱性水体中，这些官能团处于去质子化状态，是吸附镁、钙离子的良好载体.微生物吸附镁、钙离子导致细胞微环境中出现高浓度的镁、钙离子，促进成核反应的发生.细胞微环境中镁、钙离子的浓度受细胞表面吸附能力、细胞浓度以及水体初始镁、钙浓度的影响.有研究表明，羧基和磷酸基是吸附阳离子最为有效的官能团，其中羧基吸附钙离子的能力较吸附镁离子的更强 (Beveridge and Murray, 1980).微生物细胞吸附镁、钙离子后，水溶液中的镁、钙离子的活度相应减小；细胞浓度影响镁、钙离子在水体和细胞表面之间的分配，从而影响碳酸钙镁矿物的沉淀.
本研究表明J7-1，J7-3和LJ7这三株嗜盐古菌在200‰盐度条件下，在细胞浓度 (OD600) 为2.5的细胞浓度下均能诱导白云石沉淀，而在低浓度无法诱导白云石沉淀，表明细胞浓度显著影响白云石的沉淀.较高的细胞浓度对白云石沉淀可能有两方面影响：(1) 提供更多富含镁离子、钙离子的晶核位点；(2) 适当调节镁、钙离子在水相和细胞相之间的分配，使细胞表面微环境中的镁、钙离子以及对于白云石的饱和度达到最佳值.该推测与前人的研究类似 (Fortin et al., 1997; García-Del-Cura et al., 2014)，从而进一步说明较高的细胞浓度对白云石沉淀有促进作用.然而，细胞浓度对白云石沉淀的具体机理仍然需要大量实验工作予以验证.
而在280‰盐度条件下，在较低的细胞浓度下即有白云石衍射峰的出现 (图 2④、⑥)，在以LJ7为材料时，在细胞浓度 (OD600) 为1.5时仅有白云石的衍射峰出现 (图 2⑥ f3).笔者发现在高盐度下，更容易形成白云石，这可能与嗜盐菌在高盐度下能形成更多的羧基官能团密切相关.虽然细胞浓度较低但在高盐环境中，嗜盐古菌会在细胞表面合成更多的富含羧基的有机质，使嗜盐古菌细胞表面羧基含量随着盐度的增加而增加 (Voegerl, 2014; 邱轩, 2014)，从而有效地促进镁离子与钙离子以1:1的比例进入碳酸盐晶格，促进白云石的形成.前人的研究也发现，具有诱导白云石沉淀能力的微生物，其表面普遍含有高密度的羧基 (Kenward et al., 2013)；细胞表面的羧基官能团对白云石沉淀有促进作用，尤其是富羧基有机质有利于白云石成核 (Roberts et al., 2013)，细胞表面的羧基对白云石沉淀可能有两重作用：一方面，羧基是吸附镁、钙离子的有效位点；另一方面，羧基参与的水合镁离子的脱水过程需要的吉布斯自由能较其直接脱水过程的低，能够降低水溶碳酸镁分子与水溶碳酸钙分子形成过程中的焓变差值，促使二者以1:1的速率形成并进入碳酸盐晶格 (Kenward et al., 2013).因此笔者推测细胞表面富羧基是微生物在更高盐度下更容易诱导白云石形成的决定性因素之一.
4. 结论
本文通过模拟实验，探讨了不同盐度以及不同细胞浓度对嗜盐古菌诱导白云石沉淀的影响.结果表明3株嗜盐古菌均具有诱导白云石的能力，所形成的白云石形态为球型、哑铃型、花椰菜型以及球型聚集体.高盐度 (280‰) 有利于嗜盐古菌沉淀白云石，在实验考察的细胞浓度范围内 (OD600 1.0~2.5) 均有白云石的形成；而在较低盐度下 (200‰)，只有高细胞浓度下 (OD600 2.5) 才有白云石的形成.高盐度下嗜盐古菌能在细胞表面合成更多的含羧基的有机质以及高细胞浓度下羧基总量的增加被认为是嗜盐古菌诱导白云石形成的关键所在.本研究对深入理解微生物成因白云石的机理具有重要意义，同时也很好地解释了现生白云石均发现在高盐环境的现象.
致谢: 本研究XRD分析在中国地质大学 (武汉) 材料与化学学院完成，SEM分析在中国地质大学 (武汉) 生物地质与环境地质国家重点实验室完成，感谢审稿专家提出的建议和意见.在此一并致谢. -
图 1 嗜盐古菌J7-1、J7-3、LJ7生长曲线
a，c，e分别为J7-1、J7-3和LJ7在200‰盐度下的生长曲线；b，d，f分别为J7-1、J7-3和LJ7在280‰盐度下的生长曲线
Fig. 1. Growth curves of halophilic archaea J7-1, J7-3 and LJ7
图 2 三株嗜盐古菌诱导形成的矿物的XRD图谱
①，③，⑤分别表示J7-1，J7-3，LJ7在200‰盐度下诱导形成的矿物XRD图谱；②，④，⑥分别表示J7-1，J7-3，LJ7在280‰盐度下诱导形成的矿物XRD图谱.x1~5分别表示沉淀体系中菌液浓度 (OD600) 为2.5，2.0，1.5，1.0和0；x为a，b，c，d，e，f.XRD图谱上标注的M.单水合方解石，A.文石，D.白云石
Fig. 2. XRD spectra of the precipitates induced by three halophilic archaeal strains
图 3 嗜盐古菌诱导形成的白云石的形态特征及元素组成
a.J7-1-200-2.5体系中哑铃型白云石；b.J7-1-280-2.5体系中球型白云石；c.LJ7-200-2.5体系中花椰菜型白云石；d.J7-1-200-2.5体系中聚集体型白云石
Fig. 3. Morphology and elemental composition of dolomite induced by halophilic archaea
表 1 嗜盐古菌沉淀白云石实验体系的组成
Table 1. The componentsof dolomite precipitation experiments with halophilic archaea
组分 200‰沉淀体系 280‰沉淀体系 细胞悬液 10.00 mL 10.00 mL 1.00 mol/L MgCl2 2.00 mL 2.00 mL 0.10 mol/L CaCl2 2.00 mL 2.00 mL 0.20 mol/L Na2CO3 2.00 mL 2.00 mL NaCl 1.75 g 2.55 g 超纯水 补至20.00 mL 补至20.00 mL 
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表 2 各沉淀体系中白云石特征峰的“d值”及2θ角
Table 2. The"d valve" and 2θ of dolomite diffraction peaks in experiments with halophilic archaea
沉淀体系 d104值 (A) 2θ值 (°) d113值 (A) 2θ值 (°) J7-1-200-2.5* 2.887 7 30.941 J7-1-280-2.5 2.891 1 30.905 2.191 5 41.156 J7-3-200-2.5 2.911 6 30.681 J7-3-280-1.5 2.893 4 30.879 2.191 0 41.167 J7-3-280-2.0 2.908 0 30.720 2.191 0 41.167 J7-3-280-2.5 2.893 4 30.879 2.193 0 41.130 LJ7-200-2.5 2.908 5 30.715 2.101 0 40.971 LJ7-280-1.5 2.897 8 30.831 2.199 0 41.009 LJ7-280-2.0 2.902 0 30.785 2.201 0 40.971 LJ7-280-2.5 2.897 8 30.831 2.200 9 40.972 注：*为J7-1-200-2.5：J7-1为菌株名称，200为沉淀体系的盐度 (‰)，2.5为细胞浓度 (OD600) 为2.5.
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